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    技术服务、试剂、抗体、细胞库 / 细胞培养、ELISA 试剂盒

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「WB急救室」99%的实验者可能踩过的SDS-PAGE凝胶八大“雷区”,灵活选择提前配制或现用现配!

18 人阅读发布时间:2026-03-25 11:32

制备一块凝聚均匀、无气泡、不漏的SDS-PAGE凝胶是基本“童子功”,但是在实际操作中,我们还是会遇到千奇百怪的状况。

 

「WB急救室」第22期,我们整理了SDS-PAGE凝胶配制过程中99%实验者可能会踩的雷区,分享优化建议,助你轻松搞定完美电泳!

01 凝胶配制疑难杂症

 

1. 漏胶

 

诊断结果:90%以上是因为玻璃板没有对齐。

 

优化建议:在锁扣时要保证玻璃板对齐,可以用一手食指指腹按压厚玻璃板一侧上缘,拇指指腹按压薄玻璃板同侧上缘。

玻璃板一定要干燥,有水的玻璃板会吸得很紧,难以对齐。

玻璃板底部缺损、边条密闭性差、塑料夹子太松等也会造成漏胶,可以在灌胶之前用纯水进行测试。

 

2. 胶不凝

 

诊断结果:90%以上原因是APS或TEMED失效,也可能是溶液没有混匀。

 

优化建议:检查试剂有效期,及时更换新的试剂。胶液凝固时间没有想象中的那么快,完全有振荡混匀的时间。

 

3. 胶凝的不均匀

 

诊断结果:玻璃板没洗干净,表面有灰尘;试剂有沉淀,没混匀;酒精盖封时加的太快。

 

优化建议:充分清洗玻璃板,操作过程中戴无尘手套。酒精用移液枪缓慢注入,边加边移动枪头。

 

4. 胶中有气泡

 

诊断结果:胶液中有沉淀或不溶物,玻璃板有颗粒,梳子下缘有气泡。

 

优化建议:充分清洗玻璃板,操作过程中戴无尘手套。凝胶充分混匀,储存液配好后过滤。梳子从一侧慢慢插入。如果是自底部向上出现成串的气泡,可能是胶垫材质所致,改用实心的软胶垫或者加一层保鲜膜。

 

5. 浓缩胶边缘有缺损

 

诊断结果:边条老化破损导致。

 

优化建议:更换新的密封边条。

 

6. 拔梳子后泳道有胶丝

 

诊断结果:TEMED用量太多导致胶凝得太快,插梳子之前胶已经部分凝固。

 

优化建议:减少五分之一的TEMED用量。

 

7. 拔梳子后泳道歪了

 

诊断结果:梳子与玻璃板不匹配。

 

优化建议:在未灌胶前先试梳子是否匹配。

 

8. 电泳时浓缩胶出现“漏液”

 

诊断结果:玻璃板与胶局部分离产生了缝隙。

 

优化建议:取玻璃板时要小心,不能有分离玻璃板

与胶的动作。避免两块凝胶玻璃板直接接触保存。

 

IMG_20250529_151400 拷贝.jpg

02 现用现配VS提前配制

 

在制胶的过程中,童鞋是不是会经常遇到这样的疑惑:“现用现配”好呢还是“提前配胶”更好?尤其是现在“预制”概念的普及。

 

 

现用现配

提前配制

凝胶稳定性

高,更好地保持凝胶性能和稳定性,更有效的分离蛋白质,获得清晰条带

较差,APS、TEMED因氧化逐渐分解,凝胶聚合度和硬度发生变化,导致条带模糊或不均匀

时间管理

增加实验准备的时间成本

跳过繁琐配胶环节,直接开始后续实验,操作更丝滑

误差大小

凝固不充分会造成胶孔不平或有絮状物。气温低不易凝固,增加TEMED会导致胶密度改变,产生误差

凝胶条件一致,浓度和均匀性易控制,减少凝胶带来的误差

 

根据实验的具体需求、实验室条件、时间安排灵活选择配胶方式,才是“明智之选”。

 

如果时间充裕且需要确保凝胶新鲜度,可选择现用现配,以便获得更清晰的条带和准确的定量结果。

 

如果时间紧凑可选择提前多配几块胶,在节省时间的同时提高实验重复性。

 

现用现配 vs 提前配制,从来都不是二选一,需要根据你的时间和经费进行合理的“排兵布阵”,目的是为了快速做出WB理想结果。

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