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97 人阅读发布时间:2026-03-24 17:57
「WB急救室」第12期,直击核蛋白实验操作的5大“死亡陷阱”,优化实验中容易忽视的“亿些”细节,助你轻松跑出清晰条带。
灵魂之问:核蛋白or总蛋白?
核蛋白是定位在细胞核内的蛋白质,包括组蛋白、转录因子、DNA修复酶等。核蛋白在调控基因表达、细胞周期等生理过程中发挥重要作用。与细胞质蛋白不同,核蛋白通常与DNA结合紧密,在细胞裂解过程中容易被其他细胞器或碎片污染。
因此,我们常常会面临一个问题:WB检测核蛋白时需要提取核蛋白吗?用总蛋白能做出来吗?这里主要需要考量两点:
1)核蛋白表达水平:通过UniProt、BIOGPS、GEPIA、The Human Protein Atlas等数据库查询蛋白质的表达信息。
|
数据库 |
重要功能 |
适用场景 |
|
UniProt |
查询蛋白亚定位、组织分布、表达丰度等信息 |
初步判断蛋白是否在目标组织或细胞中表达 |
|
BIOGPS |
多物种基因表达谱 |
跨物种比较或发育阶段表达分析 |
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GEPIA |
基于TCGA数据的肿瘤、正常组织表达差异分析 |
癌症相关蛋白研究 |
|
The Human Protein Atlas |
人体各组织的免疫组化表达图谱 |
验证蛋白在特定病理状态下的表达趋势 |
以UniProt数据库为例,查询p53蛋白的表达情况,结果显示其在组织中普通存在,在细胞质、细胞核、内质网、线粒体等亚细胞中均有表达,因此可直接提取总蛋白用于WB检测。

源自UniProt数据库
2)实验目的
如果为了检测核蛋白是否存在或同一蛋白在不同样本中的含量,即定性或半定量WB检测,可根据核蛋白的表达水平选择。一般蛋白表达水平高的选择提取总蛋白,蛋白表达丰度低的选择提取核蛋白。
如果是要分析核蛋白合成后运送到不同亚单位情况或表达差异,不管蛋白表达情况如何,都需要提取核蛋白进行检测。
核蛋白提取注意事项
一般核蛋白是在浆蛋白的基础上提取的,以下操作步骤和裂解液配方可供参考。
细胞中浆蛋白的提取
1,收集细胞,3000rpm,4℃离心5min,弃上清。
2,加入1ml预冷的PBS,将细胞重悬,将细胞悬浮液移至2ml EP管中。
3,3000rpm,4℃离心5min,弃上清。
4,按照每107个细胞添加1 ml的比例,添加预冷Buffer A,重悬。4℃放置10min,离心(3000rpm,4℃离心3min)。
5,弃上清,按照1.5×107个细胞加入500µl Buffer B,重悬。4℃放置3min,离心(5000rpm,4℃离心5min)。
6,吸取上清。上清为浆蛋白。
细胞中核蛋白的提取
7,在沉淀中加入Buffer C,按照1.5×107个细胞加入500µl Buffer C,重悬。4℃放置3min,5000rpm离心1min,弃上清,12000rpm离心30sec,完全吸净上清。
8,沉淀中加入50 µl Buffer D,重悬。超声处理(1.2"×5)。4℃放置30min,每隔10min振荡一次。
9,12000rpm,4℃离心10min,取上清,即为核蛋白。
Buffer A的配制:
|
组分 |
终浓度 |
母液 |
配10 ml溶液所需量 |
|
Hepes pH7.9 |
10 mM |
1 M |
100 µl |
|
MgCl2 |
1.5 mM |
2 M |
7.5 µl |
|
KCl |
10 mM |
250 mM |
400 µl |
|
DTT |
0.5 mM |
0.1 M |
50 µl |
|
剩余体积用ddH2O补齐。 |
|||
Buffer B的配制(2 ml):
|
组分 |
用量 |
|
Buffer A |
1960 µl |
|
10% NP-40 |
20 µl |
|
10 mg/ml PMSF |
20 µl |
|
Aprotinin或Cockltail |
1 µl |
Buffer C的配制:
|
组分 |
终浓度 |
母液 |
配10 ml溶液所需量 |
|
Hepes pH7.9 |
20 mM |
1 M |
200 µl |
|
甘油 |
25% |
100% |
2.5 ml |
|
NaCl |
0.42 M |
3 M |
1.4 ml |
|
DTT |
0.5 mM |
0.1 M |
50 µl |
|
EDTA |
0.2 mM |
0.5 M |
4 µl |
|
NP-40 |
0.2% |
10% |
200 µl |
|
剩余体积用ddH2O补齐。 |
|||
Buffer D的配制(2 ml):
|
组分 |
用量 |
|
Buffer C |
1980 µl |
|
10 mg/ml PMSF |
20 µl |
|
Aprotinin或Cockltail |
1 µl |
内参选择是关键
核蛋白WB检测的内参选择并非固定,需要根据实验样品和实验目的来确定。
1)使用总蛋白作为样品,检测核蛋白表达情况,可以选择管家基因作为内参,如Actin、Tubulin、GAPDH。内参的目的是校正蛋白上样过程中的误差,保证实验结果准确,以及检测蛋白转膜是否完全,整个WB显色发光体系是否正常。
2)使用分离出的细胞核组分作为样品,检测核蛋白表达、定位或与其他组分检表达差异时,需要选择特异的细胞核内参,如Lamin A/C、Lamin B、核孔蛋白,建议同时添加管家基因作“双内参”。验证样品是核蛋白的同时,排除其他组分的干扰。
总之,WB检测核蛋白,并非一定要提取核蛋白,优先考虑降低实验难度。如果必须提取核蛋白,则要规范操作,选择合适的内参,确保实验结果准确可信。