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71 人阅读发布时间:2026-03-25 15:14
显色这一步,90%的实验者可能都踩过的坑:背景深、信号弱、颜色诡异。ELISA实验中最常用的HRP-TMB显色系统,看似只是“加液-孵育-读数”的简单三步,实则暗藏玄机。
「ELISA问诊室」第14期,我们将结合TMB显色液配方及其操作步骤,重点分享显色结果中的异常问题,希望通过原因分析能助你找到解决问题的方法。
01 TMB显色液配方
目前市场上已有成熟的TMB显色液销售,多为单组分或双组份。我们基本已经不再配制显色液。在这里,我们扒拉了几个“秘方”,重温一下经典记忆,以备不时之需。
方案一:
|
A液(500 mL) |
|
|
柠檬酸 |
2.1 g |
|
TMB |
0.238 g |
|
ddH2O |
至500 mL |
|
B液(500 mL) |
|
|
柠檬酸 |
4.2 g |
|
Na2HPO4▪12H2O |
15.19 g |
|
30% H2O2 |
0.5 mL |
|
ddH2O |
至500 mL |
|
将A、B液按1:1体积比混合,现用现配 |
|
方案二:
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A液(100 mL) |
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|
TMB |
0.02 g |
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无水乙醇 |
10 mL |
|
ddH2O |
至100 mL |
|
B液(200 mL) |
|
|
柠檬酸 |
1.87 g |
|
Na2HPO4▪12H2O |
14.34 g |
|
0.75%CH6N2O3 |
1.28 mL |
|
ddH2O |
定容至200 mL,调pH至5.0-5.4 |
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将A、B液按1:1体积比混合,现用现配 |
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方案三:
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组分 |
用量 |
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甘油 |
10 mL |
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PEG2000 |
10 g |
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DMSO |
10 mL |
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TMB |
1.3g |
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环糊精 |
2.0 g |
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EDTA |
0.24 g |
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柠檬酸 |
2.0 g |
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异丙醇 |
5 mL |
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反丁烯二酸 |
1.0 g |
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H2O2 |
0.22% |
|
ddH2O |
定容至100 mL |
显色操作步骤
显色操作简单,概述如下:
1,每孔加入100μl 或200μl TMB显色液,盖上覆膜,37℃避光孵育10-20分钟。根据颜色的实际变化,适时终止反应,一般不超过30分钟。当标准品孔中出现蓝色梯度时可终止反应。
2,提前打开酶标仪预热15分钟。
3,显色后,孔内液体不可弃掉,立即加入50μl或100μl反应终止液(如2M H2SO4)。颜色由蓝色立即变为黄色。添加终止液的顺序应与添加TMB底物的顺序一致。
酶标仪在450nm处读取OD值,一般在30分钟内完成读值。
显色异常结果
显色作为ELISA中的最后一步反应,将直接决定实验的成败。反应温度和时间是影响显色的关键因素。定性检测可在室温进行,时间要求不严格,可根据标准品、对照孔的显色情况判断。在定量检测中就要严格按照规定操作,力求准确。
以下是ELISA显色异常结果汇总:
1,背景颜色过深
可能原因:
· 洗板不充分,残留物与底物反应
· 封闭不彻底,导致非特异性吸附
· 底物孵育时间过长、TMB浓度过高、酶结合物浓度过高等。
2,显色过浅或无颜色
可能原因:
· 样品含量低
· 酶结合物失活,如酶标一抗、酶标二抗等
· 底物孵育温度过低或时间过短
· 底物变质失活
3,显色结果不稳定
可能原因:
· 底物保存不当或过期
· 实验室中的温度、湿度变化较大
· 操作过程中移液速度、力度不均衡
4,显色颜色非蓝色
可能原因:
· 底物过度氧化会变成褐色或棕色
· 底物浓度过高会导致颜色集中,显示为深蓝色或黑褐色
· HRP酶结合物工作液浓度过高,或样品浓度远高于检测范围时,会出现墨绿色或深蓝色
当pH值发生变化时,颜色也会变化。加酸颜色会变浅,从蓝色到绿色再到黄色
5,TMB底物在使用前变色
可能原因:
· 环境中存在氧化物,比如血液、汗液中存在过氧化物酶
· TMB要现用现配,低温避光保存。时间长了、反复使用、不避光都可能造成氧化
· 避免被H2O2、漂白剂、清洁剂等污染
6,显色后蓝色迅速消失
可能原因:
显色系统中存在还原性物质,比如水、buffer或试剂中含有Fe2+或乙醇等。
7,加入终止液后,孔中液体变黑或产生黑色沉淀
可能原因:
· HRP酶结合物浓度过高
· 样本浓度过高
· 终止液中硫酸浓度过高或变质可能会发生炭化反应
注:酶结合物是指酶与抗原或抗体结合的复合物,如酶标一抗、酶标二抗、酶标蛋白等。